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Hoechst 33342 Dyes Chemikalie

Kat.-Nr.: S0485

Hoechst 33342 (Pibenzimol, Bisbenzimid H 33342, HOE 33342, HO342) ist ein membrangängiger Fluoreszenzfarbstoff, der lebende Zellen anfärben kann. Diese Verbindung bindet an Regionen der DNA mit hohem Gehalt an Adenin in der kleinen Furche und erhöht die Fluoreszenz erheblich. Sie ermöglicht eine einfache Visualisierung des Zellkerns in Interphasezellen und der Chromosomen in mitotischen Zellen.
Hoechst 33342 Dyes Chemikalie Chemical Structure

Chemische Struktur

Molekulargewicht: 452.55

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Qualitätskontrolle (Quality Control)

Charge: Reinheit: 99.94%
99.94

Chemische Informationen, Lagerung & Stabilität (Chemical Information, Storage & Stability)

Molekulargewicht 452.55 Formel

C27H28N6O

Lagerung (Ab Erhaltdatum) 3 years -20°C powder
CAS-Nr. 23491-52-3 -- Lagerung von Stammlösungen

Synonyme Pibenzimol, bisBenzimide H 33342, HOE 33342, HO342 Smiles CCOC1=CC=C(C=C1)C2=NC3=C(N2)C=C(C=C3)C4=NC5=C(N4)C=C(C=C5)N6CCN(CC6)C

Löslichkeit (Solubility)

In vitro
Charge:

Water : 90 mg/mL

DMSO : 10 mg/mL (22.09 mM)
(Feuchtigkeitskontaminiertes DMSO kann die Löslichkeit verringern. Verwenden Sie frisches, wasserfreies DMSO.)

Ethanol : Insoluble

Molaritätsrechner

Masse Konzentration Volumen Molekulargewicht
Verdünnungsrechner Molekulargewicht-Rechner

In vivo
Charge:

In-vivo-Formulierungsrechner (Klare Lösung)

Schritt 1: Geben Sie unten die Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier einplanen, um Verluste während des Experiments auszugleichen)

mg/kg g μL

Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, nicht die Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn im Abschnitt Löslichkeit keine In-vivo-Formulierung angegeben ist.)

% DMSO % % Tween 80 % ddH2O
%DMSO %

Berechnungsergebnisse:

Arbeitskonzentration: mg/ml;

Methode zur Herstellung der DMSO-Stammflüssigkeit: mg Wirkstoff voraufgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammflüssigkeit mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der jeweiligen Wirkstoffcharge überschreitet. )

Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammflüssigkeit, fügen Sie als Nächstes hinzuμL PEG300, mischen und aufklären, fügen Sie als Nächstes hinzuμL Tween 80, mischen und aufklären, fügen Sie als Nächstes hinzu μL ddH2O, mischen und aufklären.

Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammflüssigkeit, fügen Sie als Nächstes hinzu μL Maisöl, mischen und aufklären.

Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, die Lösungsmittel in der richtigen Reihenfolge hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die im vorherigen Schritt erhaltene Lösung klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen. Physikalische Methoden wie Vortexen, Ultraschall oder ein warmes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösungsvorgangs verwendet werden.

Wirkungsmechanismus (Mechanism of Action)

Targets/IC50/Ki
DNA
In vitro

1.1 Preparation of the stock solution
Dissolve 10 mg of Hoechst 33342 in 5 mL DMSO
Note: It is recommended to store the stock solution at 4℃ or -20℃ away from light and avoid repetitive freeze-thaw cycles.
1.2 Preparation of this compound working solution
Dilute the stock solution in serum-free cell culture medium or PBS to obtain final concentration 10 μg/mL this chemical working solution.
Note: Please adjust the concentration of this reagent working solution according to the actual situation.
1.Cell staining
2.1 Suspension cells(6-well plate)
a. Centrifuge at 1000 g at 4℃ for 3-5 minutes and then discard the supernatant. Wash twice with PBS, 5 minutes each time. The cell density is 1×106/mL.
b. Add 1 mL of working solution, and then incubate at room temperature for 3-10 minutes.
c. Centrifuge at 400 g at 4℃ for 3-4 minutes and then discard the supernatant.
d. Wash twice with PBS, 5 minutes each time.
e. Resuspend cells with serum-free cell culture medium or PBS. Observation by fluorescence microscopy or flow cytometry.
2.2 Adherent cells
a. Culture adherent cells on sterile coverslips.
b. Remove the coverslip from the medium and aspirate excess medium.
c. Add 100 μL of working solution, gently shake it to completely cover the cells,and then incubate at room temperature for 3-10 minutes.
d. Wash twice with medium, 5 minutes each time.Observation by fluorescence microscopy or flow cytometry.

Referenzen